Provas

A fêmea de E. vermicularis deposita ovos na região perianal, por isso o exame de fezes é pouco sensível. A fita gomada (Graham) ou swab anal é o método de escolha. O item está certo.

A coloração de Ziehl-Neelsen cora micobactérias, como M. tuberculosis, que retêm a fucsina após a descoloração com álcool-ácido, devido aos ácidos micólicos da parede. O item está certo.

A microscopia de campo escuro permite visualizar T. pallidum vivo, que não é visível ao Gram, e é método consagrado para a detecção direta em lesões de sífilis primária. A afirmação de que seu desempenho é inferior às demais metodologias é falsa. O item está errado.

As bactérias são muito pequenas para serem avaliadas adequadamente com objetiva de 10x. A leitura do Gram é feita com objetiva de 100x e óleo de imersão. O item está errado.

Na semeadura qualitativa, o material (swab ou alça estéril) é espalhado por estrias, com flambagem da alça entre as áreas. Isso gera um gradiente decrescente de inóculo e permite isolar colônias distintas. O item está certo.

A pesquisa de larvas vivas de Strongyloides stercoralis é feita preferencialmente por Baermann-Moraes, que explora hidro e termotropismo. A sedimentação espontânea de Hoffman é inespecífica e pouco sensível para larvas. O item está errado.

O hidrotropismo positivo de larvas, com fezes em água morna, é o princípio dos métodos de Baermann-Moraes (e Rugai), não o de Faust. O método de Faust é de centrífugo-flutuação em sulfato de zinco, para cistos de protozoários e alguns ovos leves. O item está errado.

O Kato-Katz é o método quantitativo recomendado pela OMS e pelo Ministério da Saúde para inquéritos coproscópicos em áreas endêmicas, sobretudo para Schistosoma mansoni. Permite contar ovos por grama de fezes e estimar a carga parasitária. O item está certo.

A técnica de Hoffman, Pons e Janer é de sedimentação espontânea, não exige centrífuga, tem baixo custo, execução simples e amplo espectro, sendo muito usada nos serviços de saúde. Conforme o gabarito, o item está certo.

O MIF (mertiolato-iodo-formol) fixa e cora cistos e trofozoítos de protozoários, além de ovos e larvas de helmintos. Portanto, não é contraindicado para helmintos nem destrói os ovos. O item está errado.

Os conservadores usuais de fezes para exame parasitológico incluem formol a 10%, álcool polivinílico (PVA), MIF (mertiolato-iodo-formol) e SAF (acetato de sódio, ácido acético e formaldeído). O item os lista corretamente, por isso está certo.

Os oocistos de Cryptosporidium, Cystoisospora (Isospora) e Cyclospora são álcool-ácido resistentes e podem ser corados pelo Ziehl-Neelsen modificado. A técnica pode ser feita tanto em fezes frescas quanto em fezes conservadas, por exemplo em formol, depois de concentradas. A afirmação de que exige fezes frescas é falsa.

O formol a 10% preserva ovos, larvas e cistos por tempo prolongado. As fezes assim conservadas podem ser processadas por técnicas de sedimentação, como a de Hoffmann, Pons e Janer (Lutz), e por concentração com formol-éter.

A formalina tamponada a 10% preserva ovos, larvas e cistos. O SAF (acetato de sódio, ácido acético e formaldeído) também preserva a morfologia, e permite ainda colorações permanentes, como a hematoxilina férrica. Ambos são fixadores de uso rotineiro em parasitologia.

As veias da fossa antecubital, em especial a cubital mediana, são calibrosas, de fácil acesso e fixas, o que facilita a punção. Por isso são as preferidas para a coleta de sangue.

Choque ou dor irradiada indica que a agulha atingiu uma terminação nervosa. A punção deve ser interrompida e a agulha retirada, para evitar lesão nervosa. A sensação não confirma que a agulha está na veia.

A coleta suprapúbica é feita por punção aspirativa da bexiga, realizada por profissional habilitado. O saco coletor acoplado à genitália é outra técnica, a coleta infantil, e o item as confunde.

Na ordem de coleta, os frascos de hemocultura (estéreis) vêm antes dos demais tubos. Assim se evita a contaminação por microrganismos ou resíduos de aditivos dos outros tubos. Coletá-la por último contraria essa ordem.

Diante de um hematoma, a coleta deve ser interrompida, a agulha retirada e o local pressionado por tempo suficiente para estancar o sangramento, pelo menos 5 minutos segundo o enunciado. Isso reduz a extensão do hematoma e o desconforto do paciente.